Перейти к:
Морфологическое исследование сердца при фибрилляции предсердий. От патогенеза к лечению
https://doi.org/10.15829/1560-4071-2025-6706
EDN: MCCTDC
Аннотация
Цель. Оценить влияние различных патологических процессов на патогенез фибрилляции предсердий (ФП).
Материал и методы. У 42 пациентов, умерших от различных заболеваний, измерялась толщина жировой клетчатки передней брюшной стенки, взвешивались сердца и предварительно удаленный эпикардиальный жир (ЭЖ), вычислялось отношение массы сердца к массе ЭЖ. Еще у 52 пациентов исследовался миокард из зон терминального гребня, пучка Бахмана, верхней и нижней части задней стенки левого предсердия между устьями легочных вен. У 17 из них была длительно персистирующая ФП, у 7 — пароксизмальная. Проводились иммуногистохимическое исследование (ИГХИ) с антителами к коллагенам I и III, к Isl1 и иммунофлуоресцентное — с коктейлем Isl1/desmin.
Результаты. Не было выявлено корреляции между массой ЭЖ, толщиной жировой клетчатки и ФП (соответственно, р=0,85, r=-0,029 и р=0,09, r=-0,29), средняя относительная площадь фиброзной ткани у пациентов без сердечнососудистой патологии в различных зонах предсердий составила от 6,0±4,1% до 9,9±6,3%, достоверно отличаясь во всех исследованных зонах предсердий в группе с длительно персистирующей ФП (р<0,05). Амилоидоз предсердий был выявлен только в 3 случаях. Определена сильная корреляция ФП с коллагеном III (r=0,869, p<0,01). ИГХИ выявило Isl1+стволовые клетки кардиомиоцитов.
Заключение. Выявлена достоверная связь ФП со степенью фиброза предсердий, который обусловлен отложением коллагена III, а не коллагена I. Установлено отсутствие зависимости ФП от массы ЭЖ, ожирения и амилоидоза. Обнаружение стволовых клеток кардиомиоцитов в предсердии у пожилых пациентов открывает перспективы для клеточной терапии.
Для цитирования:
Митрофанова Л.Б., Силкин M.С., Зубарев С.В. Морфологическое исследование сердца при фибрилляции предсердий. От патогенеза к лечению. Российский кардиологический журнал. 2025;30(4S):6706. https://doi.org/10.15829/1560-4071-2025-6706. EDN: MCCTDC
For citation:
Mitrofanova L.B., Silkin M.S., Zubarev S.V. The study of cardiac morphology in atrial fibrillation. From pathogenesis to treatment. Russian Journal of Cardiology. 2025;30(4S):6706. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1560-4071-2025-6706. EDN: MCCTDC
В настоящее время многие исследователи считают, что воспалительные процессы являются ключевыми факторами патофизиологии фибрилляции предсердий (ФП) [1]. Воспаление способствует как электрическому, так и структурному ремоделированию предсердий и тромбозу у пациентов с ФП, и терапия, направленная на определенные воспалительные каскады, может быть потенциальной стратегией профилактики и лечения ФП [2]. Исходом воспаления и некроза является фиброз, который также ведет к структурному ремоделированию предсердий. Коллаген — основной структурный белок внеклеточного матрикса сердца. Коллаген I типа и коллаген III типа составляют соответственно около 85% и 11% от общего содержания коллагена сердца. Эти два типа коллагена имеют значительно различающиеся механические свойства. Коллаген I типа обеспечивает прочность на разрыв и жесткость, тогда как коллаген III типа обеспечивает эластичность. Считается, что последний увеличивается на начальных стадиях ремоделирования сердца и позже заменяется коллагеном I, что изменяет биомеханику сердца, ухудшает сердечную функцию и приводит к хронической сердечной недостаточности (ХСН) [3]. На сегодняшний день активно изучается возможность лечения фиброза ингибиторами ангиотензинпревращающего фермента и лизилоксидазы [4].
Описывают также депозиты амилоида в операционном материале левого предсердия (ЛП) у пожилых больных [5], рассуждая о влиянии этого патологического процесса на ФП. Кроме того, в последние годы появились статьи о влиянии эпикардиального жира (ЭЖ) на ФП через структурное и электрическое ремоделирование предсердий как прямым (например, путем инфильтрации жировой ткани, приводящей к изменению электрофизиологических свойств предсердий), так и косвенными механизмами (например, выступая в качестве источника паракринных модуляторов воспаления миокарда и окислительного стресса). При этом увеличение объема ЭЖ у пациентов с ФП констатируется при компьютерной томографии [6].
Цель исследования: оценить влияние различных патологических процессов на патогенез ФП.
Материал и методы
Исследовались истории болезни и аутопсийный материал 42 пациентов от 34 до 86 лет (средний возраст 67,8±13,4 лет), 18 мужчин и 24 женщины. Основными заболеваниями у 18 пациентов были ишемическая болезнь сердца (ИБС) с гипертонической болезнью III стадии, у 9 — онкологические заболевания, у 8 — приобретенные пороки сердца различной этиологии, у 3 — дилатационная кардиомиопатия, у 3 — хроническая цереброваскулярная болезнь, у 1 — хронический тромбофлебит. 29 пациентов умерли от острой и/или ХСН, 9 — от раковой интоксикации, 2 — от инсульта с отеком головного мозга, 1 — от двусторонней пневмонии, 1 — от тромбоэмболии легочной артерии. У 5 из 42 больных была длительно персистирующая ФП, у 17 — пароксизмальная ФП. У всех пациентов измерялась толщина жировой клетчатки передней брюшной стенки, взвешивались сердца и предварительно удаленный ЭЖ, вычислялось отношение массы сердца (МС) к массе ЭЖ.
Материалом послужили 52 сердца, протоколы вскрытий и истории болезни пациентов возрастом от 33 до 96 лет (средний возраст — 68,2±14,3 года), из них 19 женщин и 33 мужчины. Основными заболеваниями у 21 пациента были ИБС с гипертонической болезнью III стадии, у 6 — онкологические заболевания, у 3 — приобретенные пороки сердца различной этиологии, у 5 — дилатационная кардиомиопатия, у 14 — хроническая цереброваскулярная болезнь, у 1 — первичная легочная гипертензия, у 1 — сепсис, у 1 — пневмония. 14 пациентов умерли от ХСН, 4 — от острой, 1 — от тампонады перикарда, 6 — от раковой интоксикации, 14 — от инсульта с отеком головного мозга, 4 — от двусторонней пневмонии, 4 — от тромбоэмболии легочной артерии, 5 — от сепсиса. У 17 больных была длительно персистирующая ФП, у 7 — пароксизмальная. Образцы миокарда по 1,5×0,5 см забирались из зон терминального гребня, пучка Бахмана, верхней и нижней части задней стенки ЛП между устьями легочных вен. Парафиновые срезы окрашивались гематоксилином с эозином, по ван Гизону и конго красным. В 10 случаях с персистирующей ФП, в 4 случаях — с пароксизмальной и в 10 случаях без ФП было проведено иммуногистохимическое исследование (ИГХИ) с антителами к коллагенам I и III фрагментов верхней части задней стенки ЛП. С целью поиска стволовых клеток миокарда в 1 случае с персистирующей ФП, в 1 случае без ФП и в 1 контрольном случае (ребенок с врожденным пороком сердца возрастом 7 мес.) было выполнено ИГХИ верхней части задней стенки ЛП с антителом к Isl1 (фактор транскрипции, кодируемый белок, играющий важную роль в эмбриогенезе островков Лангерганса поджелудочной железы; Isl1 также является маркером предшественников кардиомиоцитов) и проведено иммунофлуоресцентное исследование с коктейлем антител Isl1/desmin. В качестве первых вторичных антител использовали AlexaFluor 647® (Abcam, Великобритания), дававших красную флюоресценцию, а в качестве вторых вторичных антител — AlexaFluor 488® (Abcam, Великобритания), дававших зеленую флюоресценцию. После промывки образцы докрашивались DAPI (AppliChem, Германия) и заключались в среду DAKO. Полученные микропрепараты исследовались на флуоресцентном микроскопе Leica DM6000B. При микроскопическом исследовании с помощью анализатора изображения LeicaScope (Россия) в 20 полях зрения при ×200 высчитывалась относительная площадь фиброза и амилоидоза (отношение площади патологического процесса к площади препарата соответственно при окрасках по ван Гизону и конго красным) фрагментов стенок предсердий всех локализаций и средний диаметр кардиомиоцитов между устьями верхних легочных вен. Экспрессия коллагенов оценивалась в баллах: 1 балл — на единичных волокнах, 2 — мелкоочаговая экспрессия, 3 — крупные поля, 4 — на всех волокнах.
Статистическая обработка данных выполнялась в R 4.3.1 и IBM SPSS 29.0 с применением описательной статистики (средние значения ±SD, медианы (Me)) и сравнения групп по критерию Манна-Уитни (для непараметрических данных), t-теста (для нормального распределения). Выполнялся корреляционный анализ, использовался критерий Краскала-Уоллиса. Принят уровень значимости р<0,05.
Результаты
МС была от 200 г до 722 г, масса ЭЖ — от 18,6 до 193 г, отношение МС/ЭЖ — от 1,27 до -21,8, толщина жировой клетчатки передней брюшной стенки — от 1,5 до 8,5 см. Не было выявлено корреляции между массой ЭЖ и ФП (р=0,85, r=-0,029; рис. 1), между толщиной жировой клетчатки передней брюшной стенки и ФП (р=0,09, r=-0,29), между отношением МС к массе ЭЖ и ФП (р=0,19, r=0,2), но есть прямая корреляционная связь средней силы (р<0,001, r=0,6) между массой ЭЖ и толщиной жировой клетчатки передней брюшной стенки.

Рис. 1. Значения массы ЭЖ и толщины жировой клетчатки передней брюшной стенки у пациентов с ФП и без нее. По оси абсцисс — группы без ФП, пароксизмальная ФП и длительно персистирующая ФП; А — по оси ординат — масса эпикардиального жира в граммах; Б — толщина жировой клетчатки в см.
Средняя относительная площадь фиброзной ткани в crista terminalis у пациентов без сердечно-сосудистой патологии и ФП была 8,9±7,9%, в пучке Бахмана — 9,8±6,1%, в стенке ЛП между нижними легочными венами — 6,0±4,1%, между верхними легочными венами — 9,9±6,3% (рис. 2 А, Б). У больных с пароксизмальной ФП средняя относительная площадь фиброзной ткани в crista terminalis была 11,8±5,6%, в пучке Бахмана — 3,6±3,7%, в стенке ЛП между нижними легочными венами — 16,0±13,8%, между верхними легочными венами — 11,5±2,3%. У больных с длительно персистирующей ФП средняя относительная площадь фиброзной ткани в crista terminalis была 24,0±11,7%, в пучке Бахмана — 23,7±14,2%, в стенке ЛП между нижними легочными венами — 20,4±11,2%, между верхними легочными венами — 25,7±21,0%. Статистический анализ выявил достоверность различий относительной площади фиброзной ткани в терминальном гребне между группами без ФП и пароксизмальной ФП, между группами без ФП и персистирующей ФП, между группами ФП (р=0,004); между группой без ФП и пароксизмальной ФП (р=0,002), без ФП и персистирующей ФП (р=0,04) в пучке Бахмана, между верхними и нижними легочными венами (р=0,007). Корреляционный анализ по Пирсону выявил слабую корреляционную связь между площадью фиброзной ткани и возрастом: r=0,3, p=0,03. Амилоидоз был выявлен только в 3 случаях: 1) во всех локализациях предсердий при системном транстиретиновом амилоидозе (находка при аутопсии) у мужчины 96 лет с аортальным стенозом, относительная площадь — от 36 до 67% (рис. 2 В, Г); 2) у женщины 65 лет с хронической цереброваскулярной болезнью — в терминальном гребне относительная площадь белковых депозитов 20%, между нижними легочными венами — 19%; 3) у мужчины 72 лет с ИБС, площадь депозитов амилоида в пучке Бахмана — 9,1%. Статистический анализ показал слабую корреляционную связь между амилоидозом и возрастом: r=0,3, p=0,03.

Рис. 2. Пучок Бахмана: А — у пациента без ФП, Б — с длительно персистирующей ФП и перимускулярным фуксинофильным фиброзом (указан стрелками); окраска по ван Гизону; В, Г — с длительно персистирующей ФП и транстиретиновым амилоидозом; В — кирпично-красное окрашивание амилоида; Г — яблочно-зеленое свечение амилоида в поляризованном свете; окраска конго красным, ×100.
ИГХИ с антителами к коллагенам I и III фрагментов верхней части задней стенки ЛП во всех изучаемых группах ФП и без нее с оценкой экспрессии в баллах (рис. 3, 4) выявило сильную положительную корреляционную связь ФП с коллагеном III (r=0,869, p<0,01) и отсутствие связи с коллагеном I.

Рис. 3. ИГХИ ЛП с антителами к коллагенам. А — отсутствие экспрессии коллагена III в стенке предсердия у пациента без ФП. Б — экспрессия коллагена III (коричневое окрашивание; 4 балла), фиброз — оплетка при длительно персистирующей ФП; В — экспрессия коллагена I (коричневое окрашивание; 3 балла) вокруг мышечных волокон у пациента с пароксизмальной ФП; х200.

Рис. 4. Распространенность экспрессии коллагенов в баллах (1-4) в различных группах с ФП и без нее. А — экспрессия коллагена I, Б — коллагена III.
Определение среднего диаметра кардиомиоцитов в различных группах с ФП и без нее между верхними легочными венами не выявило какой-либо зависимости этого показателя от ФП, равно как и не было установлено связи объема ЛП и площади правого предсердия с ФП по данным эхокардиографии (рис. 5).

Рис. 5. Значения объемов ЛП и площади правого предсердия по данным эхокардиографического исследования в различных группах ФП и без нее. По оси абсцисс: группа пациентов без ФП (синий цвет), с пароксизмальной ФП (оранжевый цвет), с длительно персистирующей ФП (серый цвет). А — по оси ординат — объем ЛП в см³. Б — по оси ординат — площадь правого предсердия в см².
ИГХИ с антителом к Isl1 и иммунофлуоресцентное исследование с коктейлем Isl1/desmin выявило стволовые клетки кардиомиоцитов в ЛП у ребенка 7 мес. и у мужчин 65 и 73 лет с ФП и без нее (рис. 6).

Рис. 6. Стволовые клетки кардиомиоцитов: А — в ЛП ребенка 7 мес. Яркое коричневое окрашивание ядер Isl1 при иммуногистохимическом исследовании; Б, В, Г — стволовые клетки кардиомиоцитов в стенке ЛП между верхними легочными венами при флуоресцентной микроскопии. А — у мужчины 65 лет без ФП; В, Г — у мужчины 73 лет с персистирующей ФП. Красная флуоресценция — десмин, зеленая — Isl1, синяя — DAPI (окрашивание ядер), оранжевая — коэкспрессия десмина с Isl1; ×400.
Таким образом, наше исследование установило отсутствие зависимости ФП от массы ЭЖ и ожирения в целом, были установлены нормативы средней относительной площади фиброзной ткани в предсердиях (в среднем от 6 до 9,9%). Различия между этим показателем в группах без ФП и с ФП были статистически достоверны во всех локализациях предсердий с выраженным фиброзом при данном нарушении ритма, площадь которого достигала 1/4-1/5 стенок предсердий при длительно персистирующей ФП. Причем фиброз был обусловлен в основном отложением коллагена III, а не коллагена I. Депозиты амилоида были выявлены всего в 3 случаях (5,7%), причем в одном из них амилоидоз был системным. Не было установлено достоверной связи между увеличением предсердий и ФП, равно как и увеличением диаметра кардиомиоцитов (гипертрофии). Удивительным фактом для нас стало обнаружение стволовых клеток кардиомиоцитов в предсердии у пациентов 65 и 73 лет с ФП и без нее.
Обсуждение
В целом, патогенез ФП имеет много уровней: электрофизиологический, анатомический, гистологический, клеточный, ультраструктурный и молекулярный. Электрофизиологические изменения способствуют возникновению и прогрессированию ФП. Клинические исследования показали, что ФП может быть вызвана автономной стимуляцией, брадикардией, предсердной экстрасистолией, тахикардией, дополнительными путями проведения и острым растяжением предсердий [7]. Электрические или очаговые механизмы ФП включают аномальный автоматизм, триггерную активность и множественные вариабельные реципрокные паттерны [8][9]. При ФП наблюдались снижение тока Ca²⁺ L-типа (ICaL), перегрузка Ca⁺, изменения тока K⁺ (IKACh, IK1), тока Na⁺ (INa) и транзиторного внешнего тока (Ito) [10]. В свою очередь, ионные токи могут напрямую влиять на функцию митохондрий кардиомиоцитов, поскольку ранее было показано, что высокое содержание Ca²⁺ ингибирует митохондриальное дыхание, рассеивает мембранный потенциал и подавляет продукцию АТФ [11][12]. Ремоделирование кальциевого цикла может способствовать прогрессированию ФП до персистирующей и активировать профибротические пути [13].
Помимо электрофизиологических аспектов, большое значение имеет сложная анатомическая структура предсердий [14]. Известно, что проведение электрического импульса осуществляется через широкие мышечные пучки с параллельным расположением мышечных волокон [15][16]. Анатомия легочных вен способствует re-entry благодаря сочетанию резких изменений ориентации волокон и сниженной электрической связности между мышечными пучками, что создает области гетерогенной скорости проведения и локализованного блока [17-19].
Сегодня известно, что не только кардиомиоциты обладают электрической активностью в сердце. Недавние исследования показали, что фибробласты экспрессируют потенциалзависимые натриевые каналы, которые обеспечивают входящий ток (INa) [20-22]. Хотя они не являются электрически возбудимыми, они могут влиять на электрофизиологические свойства миоцитов [23]. Было обнаружено, что фибробласты электрически реагируют с миоцитами через щелевые контакты [24]. Фибробласты активируются при воспалительной реакции, а затем дифференцируются в миофибробласты [25] различными путями [26]. Миофибробласты отличаются от фибробластов тем, что вырабатывают сократительные белки и демонстрируют более деполяризованный мембранный потенциал покоя [27] и большую мембранную ёмкость [28].
В настоящее время известно, что миокард содержит трёхмерную сеть телоцитов, которые плотно покрывают кардиомиоциты и контактируют со всеми типами клеток и структур [29-31]. Помимо щелевых контактов, телоциты имеют точечные, наноконтакты и планарные контакты с клетками. Они могут проникать через базальную мембрану, которая одновременно окружает две P-клетки проводящей системы сердца [32]. Sheng J, et al. [33] продемонстрировали, что телоциты предсердий и желудочков экспрессируют активируемый Ca²⁺ высокопроводящий (быстрый) калиевый ток (BK(Ca)) и внутренний выпрямляющий калиевый ток (IK(ir)), но не экспрессируют транзиторный внешний калиевый ток (Ito)) и АТФ-чувствительный калиевый ток (K(ATP)). В нескольких исследованиях были показаны специфические макрофагально-зависимые механизмы, регулирующие электрическое, структурное или автономное ремоделирование, приводящее к аритмиям [34-39]. Взаимодействие между макрофагами и сердечными фибробластами регулирует баланс сердечного фиброза [40].
Результаты настоящего исследования еще раз подтвердили на большей и более разнообразной выборке по составу заболеваний наши выводы о том, что степень фиброза не связана с возрастом, но достоверно коррелирует с наличием, тяжестью и продолжительностью ФП [41][42]. Важную роль в этом процессе, несомненно, играет хроническое воспаление, которое было также доказано нами в предыдущих работах [43][44]. Мы не подтвердили достоверной связи ФП с ожирением и увеличением массы ЭЖ, в отличие от других авторов, которые оценивали увеличение жировой клетчатки в эпикарде с помощью компьютерной томографии [45][46]. Возможно, разница в результатах обусловлена методами исследования, и следует провести сравнительный анализ выявления объема/массы ЭЖ при КТ и у секционного стола. Наше исследование также не показало должной распространенности амилоидоза у пожилых больных как причины ФП. Считается, что предсердный натрийуретический пептид высвобождается в ответ на растяжение или расширение объема предсердий, вызывая диурез, натрийурез и расширение сосудов. Белок ингибирует ренин-ангиотензин-альдостероновую систему и регулирует клеточные токи [47]. Именно с этим белком связывают изолированный амилоидоз предсердий, приводящий к ФП. Но достоверно выявляют его только в ушках предсердий [48][49]. Мы же исследовали другие локализации, патологический процесс в которых может напрямую, а не косвенно приводить к ФП. Кроме того, мы не выявили достоверной связи увеличения площади/объема предсердий с ФП. По-видимому, больший вклад в этот процесс вносит основное заболевание сердца.
Несмотря на успехи малоинвазивной хирургии ФП, эффективность однократной катетерной аблации в течение 5-летнего периода составляет 20% [50], идет непрерывный поиск гибридных операций и новых хирургических технологий [51]. Параллельно развиваются и новые терапевтические подходы, основанные на патогенезе заболевания. В частности, идет поиск эффективных препаратов — ингибиторов фиброза [52]. Хотя этиология сердечно-сосудистой дисфункции неоднородна, общей чертой прогрессирования практически всех форм является развитие фиброза сердца. Патологическое фиброзное ремоделирование включает пролиферацию и активацию резидентных сердечных фибробластов и изменение состава внеклеточного матрикса. Несмотря на существенный вклад фиброзного ремоделирования в сердечную дисфункцию, новые методы лечения сердечного фиброза не появились в клинической практике. Одним из основных ограничений в изучении и внедрении антифиброзной терапии является проблема точной количественной оценки фиброзной нагрузки [53]. Магнитно-резонансная томография сердца стала предпочтительным неинвазивным методом визуализации для безопасной диагностики фиброза миокарда. Магнитно-резонансная томография с использованием нетаргетных гадолиниевых зондов может обнаружить заместительный фиброз в виде макроскопических областей с поздним усилением гадолиния и интерстициальный фиброз путем измерения увеличения внеклеточного объема с использованием картирования T1 до и после введения гадолиния [54]. Несмотря на свою клиническую ценность, этот метод не позволяет напрямую оценить фиброз и различать подтипы коллагена. Поэтому для выявления фиброза и мониторинга эффективности терапии необходимы разработка и оптимизация молекулярных зондов для специфической визуализации типов коллагена [55]. В этой связи нормативы относительной площади фиброзной ткани в разных зонах предсердий, описанные нами, нацелены служить точкой отсчета.
ИГХИ предсердий позволило нам выявить, что у пациентов с ФП достоверно преобладает коллаген III, который способствует эластичности миокарда [56]. Более того, экспериментальное исследование Uchinaka A, et al. [57] демонстрирует снижение дисфункции левого желудочка при сверхэкспрессии этого типа коллагена. Этот факт наталкивает на мысль, а нужно ли лечить пациентов с ФП антифибротическими препаратами, тем более, что на сегодняшний день этот вид консервативной терапии находится на стадии разработки и обоснованности применения? Более того, нельзя исключить, что дополнительным эффектом аблации со стороны эндокарда или эпикарда является постнекротический фиброз, представленный коллагеном I типа, который способствует жесткости стенок предсердий, укрепляя и фиксируя их. Более обещающей, на наш взгляд, является стратегия лечения основного патологического процесса, приведшего к фиброзу, в частности, воспаления. И наконец, обнаружение стволовых клеток кардиомиоцитов даже у пациентов в пожилом возрасте открывает перспективы клеточной терапии.
Признание того, что митоз миоцитов происходит в плодном, неонатальном, взрослом и гипертрофированном сердце, и что в миокарде присутствует пул примитивных, недифференцированных клеток, позволило по-новому взглянуть на биологию сердца. Новая парадигма предполагает, что формирование миоцитов сохраняется в постнатальном периоде, во взрослом или старческом возрасте, указывая на значительный резерв роста сердца на протяжении всей жизни организма [58]. Было продемонстрировано, что сердце млекопитающих содержит органоспецифическую прогениторную клетку, экспрессирующую Isl1, которую можно локализовать, очистить, размножить и дифференцировать в зрелые кардиомиоциты [59]. Наше исследование подтвердило наличие Isl1+клеток даже у пожилых людей, а значит, и возможность осуществления этой идеи.
Заключение
Наше исследование установило отсутствие зависимости ФП от массы ЭЖ и ожирения, амилоидоза, гипертрофии мышечных волокон, увеличения объема и площади предсердий по данным эхокардиографии, но выявило достоверную связь этого нарушения ритма со степенью фиброза предсердий, который был обусловлен отложением коллагена III, а не коллагена I. Обнаружение стволовых клеток кардиомиоцитов в предсердии у пожилых пациентов открывает перспективы для клеточной терапии. В целом, результаты нашего исследования в очередной раз подчеркивают многоуровневость и сложность патогенеза ФП и открывают новые перспективы для лечения.
Отношения и деятельность: все авторы заявляют об отсутствии потенциального конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.
Список литературы
1. Ihara K, Sasano T. Role of inflammation in the pathogenesis of atrial fibrillation. Frontiers in Physiology. 2022;13:862164. doi:10.3389/fphys.2022.862164.
2. Hu YF, Chen YJ, Lin YJ, Chen SA. Inflammation and the pathogenesis of atrial fibrillation. Nature Reviews Cardiology. 2015;12(4):230-43. doi:10.1038/nrcardio.2015.2.
3. Nikolov A, Popovski N. Extracellular matrix in heart disease: focus on circulating collagen type I and III derived peptides as biomarkers of myocardial fibrosis and their potential in the prognosis of heart failure: a concise review. Metabolites. 2022;12(4):297. doi:10.3390/metabo12040297.
4. Chaher N, Lacerda S, Digilio G, et al. Non-invasive in vivo imaging of changes in Collagen III turnover in myocardial fibrosis. npj Imaging, 2024;2(1):33. doi:10.1038/s44303-024-00037-z.
5. Leone O, Boriani G, Chiappini B, et al. Amyloid deposition as a cause of atrial remodelling in persistent valvular atrial fibrillation. European heart journal. 2004;25(14):1237-41. doi:10.1016/j.ehj.2004.04.007.
6. Shin SY, Yong HS, Lim HE, et al. Total and interatrial epicardial adipose tissues are independently associated with left atrial remodeling in patients with atrial fibrillation. Journal of cardiovascular electrophysiology. 2011;22(6):647-55. doi:10.1111/j.1540-8167.2010.01993.x.
7. Weil BR, Ozcan C. Cardiomyocyte Remodeling in Atrial Fibrillation and Hibernating Myocardium: Shared Pathophysiologic Traits Identify Novel Treatment Strategies? Biomed Res Int. 2015;2015:587361. doi:10.1155/2015/587361.
8. January CT, Wann LS, Alpert JS, et al. ACC/AHA Task Force Members. 2014 AHA/ACC/ HRS guideline for the management of patients with atrial fibrillation: a report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on practice guidelines and the Heart Rhythm Society. Circulation. 2014;130(23):e199-267. doi:10.1161/CIR.0000000000000041.
9. Wakili R, Voigt N, Kääb S, et al. Recent advances in the molecular pathophysiology of atrial fibrillation. J Clin Invest. 2011;121(8):2955-68. doi:10.1172/JCI46315.
10. Nattel S. New ideas about atrial fibrillation 50 years on. Nature. 2002;415(6868):219- 26. doi:10.1038/415219a.
11. Holmuhamedov EL, Ozcan C, Jahangir A, Terzic A. Restoration of Ca2+-inhibited oxidative phosphorylation in cardiac mitochondria by mitochondrial Ca2+ unloading. Mol Cell Biochem. 2001;220(1-2):135-40. doi:10.1023/a:1010894427373.
12. Jahangir A, Ozcan C, Holmuhamedov EL, Terzic A. Increased calcium vulnerability of senescent cardiac mitochondria: protective role for a mitochondrial potassium channel opener. Mech Ageing Dev. 2001;122(10):1073-86. doi:10.1016/s0047-6374(01)00242-1.
13. Denham NC, Pearman CM, Caldwell JL, et al. Calcium in the Pathophysiology of Atrial Fibrillation and Heart Failure. Front Physiol. 2018;9:1380. doi:10.3389/fphys.2018.01380.
14. Platonov PG, Mitrofanova L, Ivanov V, Ho SY. Substrates for intra-atrial and interatrial conduction in the atrial septum: anatomical study on 84 human hearts. Heart Rhythm. 2008;5(8):1189-95. doi:10.1016/j.hrthm.2008.04.025.
15. Anderson RH, Ho SY, Becker AE. The surgical anatomy of the conduction tissues. Thorax. 1983;38(6):408-20. doi:10.1136/thx.38.6.408.
16. Митрофанова Л.Б. Анатомия, гистология и электронная микроскопия проводящей системы сердца. Современное представление и новые сведения: обзор. Российский кардиологический журнал. 2024;29(4S):6191. doi:10.15829/1560-4071-2024-6191. EDN: KUNMPI.
17. Hocini M, Ho SY, Kawara T, et al. Electrical conduction in canine pulmonary veins: electrophysiological and anatomic correlation. Circulation. 2002;105(20):2442-8. doi:10.1161/01.cir.0000016062.80020.11.
18. Arora R, Verheule S, Scott L, et al. Arrhythmogenic substrate of the pulmonary veins assessed by high-resolution optical mapping. Circulation. 2003;107(13):1816-21. doi:10.1161/01.CIR.0000058461.86339.7E.
19. Hsueh CH, Chang PC, Hsieh YC, et al. Proarrhythmic effect of blocking the small conductance calcium activated potassium channel in isolated canine left atrium. Heart Rhythm. 2013;10(6):891-8. doi:10.1016/j.hrthm.2013.01.033.
20. Sánchez J, Gomez JF, Martinez-Mateu L, et al. Heterogeneous Effects of FibroblastMyocyte Coupling in Different Regions of the Human Atria Under Conditions of Atrial Fibrillation. Front Physiol. 2019;10:847. doi:10.3389/fphys.2019.00847.
21. Chatelier A, Mercier A, Tremblier B, et al. A distinct de novo expression of Nav1.5 sodium channels in human atrial fibroblasts differentiated into myofibroblasts. J Physiol. 2012;590(17):4307-19. doi:10.1113/jphysiol.2012.233593.
22. Koivumäki JT, Clark RB, Belke D, et al. Na(+) current expression in human atrial myofibroblasts: identity and functional roles. Front Physiol. 2014;5:275. doi:10.3389/fphys.2014.00275.
23. Gaudesius G, Miragoli M, Thomas SP, Rohr S. Coupling of cardiac electrical activity over extended distances by fibroblasts of cardiac origin. Circ Res. 2003;93(5):421-8. doi:10.1161/01.RES.0000089258.40661.0C.
24. Jousset F, Maguy A, Rohr S, Kucera JP. Myofibroblasts Electrotonically Coupled to Cardiomyocytes Alter Conduction: Insights at the Cellular Level from a Detailed In silico Tissue Structure Model. Front Physiol. 2016;7:496. doi:10.3389/fphys.2016.00496.
25. Chacar S, Farès N, Bois P, Faivre JF. Basic Signaling in Cardiac Fibroblasts. J Cell Physiol. 2017;232(4):725-30. doi:10.1002/jcp.25624.
26. Jalife J, Kaur K. Atrial remodeling, fibrosis, and atrial fibrillation. Trends Cardiovasc Med. 2015;25(6):475-84. doi:10.1016/j.tcm.2014.12.015.
27. Salvarani N, Maguy A, De Simone SA, et al. TGF-β1 (Transforming Growth Factor-β1) Plays a Pivotal Role in Cardiac Myofibroblast Arrhythmogenicity. Circ Arrhythm Electrophysiol. 2017;10(5):e004567. doi:10.1161/CIRCEP.116.004567.
28. Sridhar S, Vandersickel N, Panfilov AV. Effect of myocyte-fibroblast coupling on the onset of pathological dynamics in a model of ventricular tissue. Sci Rep. 2017;7:40985. doi:10.1038/srep40985.
29. Hinescu ME, Gherghiceanu M, Mandache E, et al. Interstitial Cajal-like cells (ICLC) in human atrial myocardium J. Cell. Mol. Med. 2005;9(4):972-5. doi:10.1111/j.1582-4934.2006.tb00306.
30. Cretoiu D, Hummel E, Zimmermann H, et al. Human cardiac telocytes: 3D imaging by FIB-SEM tomography. J Cell Mol Med. 2014;18(11):2157-64. doi:10.1111/jcmm.12468.
31. Popescu LM, Gherghiceanu M, Cretoiu D, Radu E. The connective connection: interstitial cells of Cajal (ICC) and ICC-like cells establish synapses with immunoreactive cells. Electron microscope study in situ. J Cell Mol Med. 2005;9(3):714-30. doi:10.1111/j.1582-4934.2005.tb00502.x.
32. Mitrofanova LB, Gorshkov AN, Konovalov PV, Krylova JS. Telocytes in the human sinoatrial node. J Cell Mol Med. 2018;22(1):521-32. doi:10.1111/jcmm.13340.
33. Sheng J, Shim W, Lu J, et al. Electrophysiology of human cardiac atrial and ventricular telocytes. J Cell Mol Med. 2014;18(2):355-62. doi:10.1111/jcmm.12240.
34. Monnerat G, Alarcón ML, Vasconcellos LR, et al. Macrophage-dependent IL 1β production induces cardiac arrhythmias in diabetic mice. Nat Commun. 2016;7:13344. doi:10.1038/ncomms13344. Erratum in: Nat Commun.2021;12(1):7261.
35. Liu L, Gan S, Li B, et al. Fisetin Alleviates Atrial Inflammation, Remodeling, and Vulnerability to Atrial Fibrillation after Myocardial Infarction. Int Heart J. 2019;60(6):1398-406. doi:10.1536/ihj.19-131.
36. Miyosawa K, Iwata H, Minami-Takano A, et al. Enhanced monocyte migratory activity in the pathogenesis of structural remodeling in atrial fibrillation. PLoS One. 2020;15(10):e0240540. doi:10.1371/journal.pone.0240540.
37. Hiram R, Xiong F, Naud P, et al. The inflammation-resolution promoting molecule resolvin-D1 prevents atrial proarrhythmic remodelling in experimental right heart disease. Cardiovasc Res. 2021;117(7):1776-89. doi:10.1093/cvr/cvaa186.
38. Hulsmans M, Clauss S, Xiao L, et al. Macrophages Facilitate Electrical Conduction in the Heart. Cell. 2017;169(3):510-22. doi:10.1016/j.cell.2017.03.050.
39. Simon-Chica A, Fernández MC, Wülfers EM, et al. Novel insights into the electrophysiology of murine cardiac macrophages: relevance of voltage-gated potassium channels. Cardiovasc Res. 2022;118(3):798-813. doi:10.1093/cvr/cvab126.
40. Van Linthout S, Miteva K, Tschöpe C. Crosstalk between fibroblasts and inflammatory cells. Cardiovasc Res. 2014;102(2):258-69. doi:10.1093/cvr/cvu062.
41. Platonov PG, Mitrofanova LB, Orshanskaya V, Ho SY. Structural abnormalities in atrial walls are associated with presence and persistency of atrial fibrillation but not with age. Journal of the American College of Cardiology. 2011;58(21):2225-32. doi:10.1016/j.jacc.2011.05.061.
42. Митрофанова Л.Б. Виды фиброза и его распространенность в предсердиях при фибрилляции предсердий на фоне ишемической болезни сердца и ревматизма. Вестник аритмологии. 2014;75:10-6.
43. Mitrofanova LB, Orshanskaya V, Ho SY, Platonov PG. Histological evidence of inflammatory reaction associated with fibrosis in the atrial and ventricular walls in a case–control study of patients with history of atrial fibrillation. EP Europace. 2016;18(suppl_4), iv156 iv162. doi:10.1093/europace/euw361.
44. Митрофанова Л.Б., Хазратов А.О., Гурщенков А.В. и др. Морфологическое исследование телоцитов в левом предсердии у пациентов с длительно персистирующей фибрилляцией предсердий. Российский кардиологический журнал. 2019;(7):53-62. doi:10.15829/1560-4071-2019-7-53-62.
45. Kocyigit D, Gurses KM, Yalcin MU, et al. Periatrial epicardial adipose tissue thickness is an independent predictor of atrial fibrillation recurrence after cryoballoon-based pulmonary vein isolation. Journal of cardiovascular computed tomography. 2015;9(4):295-302. doi:10.1016/j.jcct.2015.03.011.
46. Yorgun H, Canpolat U, Aytemir K, et al. Association of epicardial and peri-atrial adiposity with the presence and severity of non-valvular atrial fibrillation. The international journal of cardiovascular imaging. 2015;31(3):649-57. doi:10.1007/s10554-014-0579-5.
47. Яшин С.М., Шубик Ю.В. Атриопатия и фибрилляция предсердий. Часть I. Вестник Санкт-Петербургского университета. Медицина. 2023;17(4):254-71. doi:10.21638/spbu11.2022.402.
48. Sukhacheva TV, Nizyaeva NV, Samsonova MV, et al. Morpho-functional changes of cardiac telocytes in isolated atrial amyloidosis in patients with atrial fibrillation. Scientific Reports. 2021;11(1):3563. doi:10.1038/s41598-021-82554-0.
49. Fayyaz AU, Bois MC, Dasari S, et al. Amyloidosis in surgically resected atrial appendages: a study of 345 consecutive cases with clinical implications. Modern Pathology. 2020;33(5):764-74. doi:10.1038/s41379-019-0407-5.
50. Tilz RR, Rillig A, Thum AM, et al. Catheter ablation of long-standing persistent atrial fibrillation: 5 year outcomes of the Hamburg Sequential Ablation Strategy. Journal of the American College of Cardiology. 2012;60(19):1921-9. doi:10.1016/j.jacc.2012.04.060.
51. Ревишвили А.Ш., Артюхина Е.А., Стребкова Е.Д. и др. Эволюция торакоскопического лечения фибрилляции предсердий: от становления до современного этапа. Комплексные проблемы сердечнососудистых заболеваний. 2023;12(2):107-21. doi:10.17802/2306-1278-2023-12-2-107-121.
52. Travers JG, Tharp CA, Rubino M, McKinsey TA. Therapeutic targets for cardiac fibrosis: from old school to next-gen. The Journal of clinical investigation. 2022;132(5):e148554. doi:10.1172/JCI148554.
53. Kasner M, Westermann D, Lopez B, et al. Diastolic tissue Doppler indexes correlate with the degree of collagen expression and cross-linking in heart failure and normal ejection fraction. Journal of the American College of Cardiology. 2011;57(8):977-85. doi:10.1016/j.jacc.2010.10.024.
54. Matsumoto H, Matsuda T, Miyamoto K, et al. Temporal change of enhancement after gadolinium injection on contrast-enhanced CMR in reperfused acute myocardial infarction. Journal of Cardiology. 2015;65(1):76-81. doi:10.1016/j.jjcc.2014.04.005.
55. Helm PA, Caravan P, French BA, et al. Postinfarction myocardial scarring in mice: molecular MR imaging with use of a collagen-targeting contrast agent. Radiology. 2008;247(3):788- 96. doi:10.1148/radiol.2473070975.
56. Chakraborty S, Dutta A, Roy A, et al. The theatrics of collagens in the myocardium: the supreme architect of the fibrotic heart. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 2025;328(6):C1893-C1920. doi:10.1152/ajpcell.01043.2024.
57. Uchinaka A, Yoshida M, Tanaka K, et al. Overexpression of collagen type III in injured myocardium prevents cardiac systolic dysfunction by changing the balance of collagen distribution. The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 2018;156(1):217-26. doi:10.1016/j.jtcvs.2018.01.097.
58. Anversa P, Kajstura J, Leri A, Bolli R. Life and death of cardiac stem cells: a paradigm shift in cardiac biology. Circulation. 2006;113(11):1451-63. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.105.595181.
59. Laugwitz KL, Moretti A, Lam J, et al. Postnatal isl1+ cardioblasts enter fully differentiated cardiomyocyte lineages. Nature. 2005;433(7026):647-53. doi:10.1038/nature03215.
Об авторах
Л. Б. МитрофановаРоссия
Д..м.н., профессор, зав. кафедрой патологической анатомии с клиникой
ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341
M. С. Силкин
Россия
Ассистент кафедры патологической анатомии с клиникой, аспирант кафедры
ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341
С. В. Зубарев
Россия
К.м.н., с.н.с. НИЛ интервенционной аритмологии, врач-кардиолог
ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341
- Установлена статистически достоверная связь фибрилляции предсердий (ФП) с фиброзом предсердий, который обусловлен в основном отложением коллагена III.
- Относительная площадь фиброзной ткани в раз-
личных зонах предсердий в норме составляет от 6 до 9,9%. - У пожилых людей вне зависимости от наличия или отсутствия ФП в левом предсердии найдены Isl1+стволовые клетки кардиомиоцитов.
- Морфологическое исследование не выявило достоверной зависимости ФП от ожирения и увеличения массы эпикардиального жира, а также от амилоидоза.
Рецензия
Для цитирования:
Митрофанова Л.Б., Силкин M.С., Зубарев С.В. Морфологическое исследование сердца при фибрилляции предсердий. От патогенеза к лечению. Российский кардиологический журнал. 2025;30(4S):6706. https://doi.org/10.15829/1560-4071-2025-6706. EDN: MCCTDC
For citation:
Mitrofanova L.B., Silkin M.S., Zubarev S.V. The study of cardiac morphology in atrial fibrillation. From pathogenesis to treatment. Russian Journal of Cardiology. 2025;30(4S):6706. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1560-4071-2025-6706. EDN: MCCTDC
JATS XML







































