ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ЛИПОПРОТЕИДОВ ПЛАЗМЫ КРОВИ КРЫСЫ: ВЛИЯНИЕ СИМПАТИЧЕСКОЙ И ПАРАСИМПАТИЧЕСКОЙ ДЕНЕРВАЦИИ ПЕЧЕНИ, ЧАСТИЧНОЙ ГЕПАТЭКТОМИИ И ИНТРАПОРТАЛЬНОГО ВВЕДЕНИЯ АТРОПИНА

Изучали физико-химические свойства липопротеидов очень низкой плотности (ЛПОНП) и двух форм липопротеидов высокой плотности (ЛПВП) - Апо А- и Апо Е-богатой в плазме крови крыс после симпатической и парасимпатической денервации печени, частичной гепатэктомии и интрапортального введения атропина. Поверхностный потенциал ЛПОНП и Е-ЛПВП во всех экспериментальных группах был значительно ниже, чем в контроле, но наиболее выраженное снижение наблюдалось после интрапортального введения атропина и через неделю после 70%-й гепатэктомии. Радиус частиц ЛПОНП и Е-ЛПВП значительно снизился после 70%-й гепатэктомии и интрапортального введения атропина, в меньшей степени - после перерезки чревных нервов и ваготомии, тогда как радиус частиц А-ЛПВП не изменился. Вязкость ядра ЛПОНП и А-ЛПВП увеличилась после симпатической денервации печени, гепатэктомии и ваготомии, причем степень увеличения для ЛПОНП при этих воздействиях была большей, чем для А-ЛПВП. В Е-ЛПВП этот параметр оставался неизменным. Доля белка в водном окружении в ЛПОНП и Е-ЛПВП была большей после ваготомии и введения атропина и не менялась в случае билатеральной перерезки чревных нервов и гепатэктомии. В А-ЛПВП этот параметр был постоянным.

Так как все названные параметры отражают сборку, структуру и трансформацию ЛП, наши результаты подтверждают предположение, что автономные нейрональные факторы влияют на продукцию ЛП в печени, действуя на посттранскрипционном уровне. 

1. Парфенова Н.С. Влияние двусторонней под диафрагмальной ваготомии на активность некоторых ферментов энергетического обмена в печени. // Бюлл. эксп. биол. мед. - 1976; 82(7): 814-816.

2. Шаныгина К.И., Парфенова Н.С. Влияние перерезки чревных и блуждающих нервов на активность и изоферментный состав лактатдегидрогеназы печени крыс. // Вопр. мед. химии. - 1977; 23(5): 650-652.

3. Shimazu T., Fujimoto T. Regulation of glycogen metabolism in liver by the autonomic nervous system. III. Differential effects of sympathetic-nerve stimulation and of catecholamines on liver phosphorylase. // Biochim. Biophys. Acta. - 1968;165:349-356.

4. Shinazu T. Innervation of the liver and glucoregulation: roles of the hypothalamus and autonomic nerves. // Nutrition. - 1996;12:65-66.

5. Shimazu T. Progress and perspective of neuro-hepatology. / In: Liver Innervation and the Neural Control of Hepatic Function, edited by T.Shimazu, John Libbey, London. - 1996; - pp. 3-13.

6. Ha Y.C., Barter P.Y. Rapid separation of plasma lipoproteins by gel permeation chromatography on agarose gel superose 6 B. // J.Chromatogr. - 1985;341(1):154-157.

7. Weisgraber K.H., Mahley R.N. Subfraction of high density lipoproteins by heparin-sepharose affinity chromatography. // J.Lipid. Res. - 1980;21(3):316-325.

8. Добрецов Г.Е. Флуоресцентные зонды в исследовании клеток, мембран и цлипопротеидов. / М. - “Наука”, 1989, 277с.

9. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения. / СПб - “Питер Ком”, 1999, 512с.

10. Metz W., Forssman W.G. Comparative morphology of liver innervation. / In: Communications of liver cells, eds. H.Popper, L.Bianchi, F.Gudat and W.Reutter, Lancaster: MTP Press. - 1980; - pp.121-127.

11. Tsuneki K., Ichihara K, Electron microscope study of vertebrate liver innervation. // Arch. Histol. Jpn. - 1981;44:1-13.

12. Miyashita T., Takeda A., Iwai M., Shimazu T. Single administration of hepatotoxic chemicals transiently decreases the gap-junction-protein levels of connexin 32 in rat liver. // Eur. J. Biochem. - 1991;196:37-42.